Tamoxifen誘導基因敲除的機制與操作指南

在現代分子生物學研究中，條件性基因敲除技術已成為探索特定基因功能的核心手段。其中，Tamoxifen（目錄號：HY-13757A；CAS No. ： 10540-29-1） 作為最常用的誘導劑之一，因其高效、可控和組織特異性強等優(yōu)點，被廣泛應用于Cre-loxP系統(tǒng)的激活。Tamoxifen  他莫昔芬：https://www.medchemexpress.cn/Tamoxifen.html。

深入探討Tamoxifen誘導基因敲除的機制與操作指南

一、誘導基因敲除模型

致病原理

利用Cre-Loxp系統(tǒng)的小鼠，通過特定組織或細胞類型的啟動子驅動Cre重組酶表達，并在靶基因兩側插入Loxp位點。將Cre重組酶與雌激素受體的配體結合域融合，構建出Cre-ER融合蛋白。在未給予Tamoxifen的情況下，Cre-ER融合蛋白與熱休克蛋白HSP90結合，滯留在細胞質中。當給予Tamoxifen后，其代謝產物4-OHT會與Cre-ER蛋白結合，激活Cre重組酶并使其進入細胞核，識別Loxp位點，介導基因敲除。為了避免內源性雌激素的干擾，通常會對雌激素受體的配體結合區(qū)進行改造，生成MerCreMer、Cre-ERT或Cre-ERT2等變異形式。

 
二、具體造模方法

實驗設計例子

小鼠品系：Cx3cr1CreERT/+: Pdgfbfl/fl（條件性敲除微膠質細胞中的Pdgfb）
給藥方案：75 mg/kg，腹腔注射，連續(xù)5天

注意事項

溶解：由于Tamoxifen難溶于水，常用玉米油（如HY-Y1888）作為溶劑。可在37°C下加熱或超聲助溶，確保完全溶解。配制過程需避光，建議現配現用。

給藥方式：最常用的途徑是腹腔注射，也可采用口服灌胃或皮下注射等方式。多次腹腔注射時，應交替注射部位以減少局部刺激。

劑量建議：一般推薦劑量為50-120 mg/kg，腹腔注射3-5次，多數情況下連續(xù)注射5天。對于孕鼠及老齡鼠（大于6月齡），劑量需適當減少，且孕鼠誘導盡量選擇孕晚期，并聯合使用孕酮以降低流產風險。

動物周齡：4-6周齡的小鼠可能對誘導更為敏感，年輕小鼠相比年老小鼠效果更佳。

潛在毒性：長時間高水平的Cre活性可能導致潛在毒性，尤其是如果敲除的是關鍵功能基因或選用純合子小鼠，可能會導致小鼠死亡。因此，在誘導后的1-2周內需密切觀察小鼠狀態(tài)，若出現異常應及時分析原因并調整實驗方案。

對照設置：對照組小鼠應在無Cre重組酶遺傳背景的情況下接受相同劑量的Tamoxifen玉米油溶液，以排除Tamoxifen本身的影響。

檢測窗口：從最后一次給藥到開始實驗的時間間隔至少為7天，確保Cre重組酶有足夠時間進入細胞核并發(fā)揮作用。

分籠飼養(yǎng)：接受Tamoxifen處理的小鼠應與未處理的小鼠分開飼養(yǎng)，避免因舔舐油性懸浮液、梳理毛發(fā)或食糞行為導致交叉污染。

三、造模成功指標

通過分子生物學和遺傳學方法驗證目的基因是否被有效敲除，常用的技術手段包括：

Western Blot (WB)：檢測蛋白質水平的變化。

PCR：用于確認DNA層面的基因重組情況。

測序：進一步驗證基因編輯的精確性。

這些方法可以幫助研究人員確認基因敲除的成功與否，并為進一步的功能研究提供堅實的基礎。通過合理的設計和嚴格的執(zhí)行，Tamoxifen誘導的基因敲除技術能夠為探索基因功能及其在疾病發(fā)生發(fā)展中的作用提供強有力的工具。