多技術協同構建 “動態 - 結構 - 功能” 完整解決方案

在類器官研究中，“看清楚” 是 “研究透” 的前提 —— 不同發育階段、不同研究目標，需要搭配不同的成像技術。結合 3D 細胞培養與監測方案及高分辨率 3D 成像方案，我們梳理出類器官相關三類核心成像技術的適用場景，精準匹配實驗需求，實現類器官的 “形態、功能、動態” 多維度研究需求
 
Part.01
長時程高內涵動態成像：活細胞 “全程追蹤”，適配高通量、動態的研究場景
這類技術以 “不干擾生長、全周期記錄、多參數分析” 為核心，通過模擬體內培養環境（穩定溫濕度、精準氣體控制），實現類器官從形成到響應外界刺激的動態監測，尤其適合需要 “長時間、無間斷、量化分析” 的研究場景。
核心技術特點
依托 BioTek Cytation™成像系統 + BioSpa8 自動化培養模塊 + MultiFlo FX 無損換液系統，可實現：
無人值守培養：8 位獨立培養位，精準控制 CO₂/O₂濃度、溫度（最高 45℃）和濕度，避免人為操作干擾；
動態成像與量化：明場觀察類器官成球過程，熒光場追蹤標記分子（如 GFP 標記 CD29），Gen5 軟件自動輸出體積、熒光強度等參數；
無損處理：AMX 模塊實現 自動化3D 細胞球無損傷換液后續操作。
適配研究場景
 
 
1. 類器官培養條件優化與質量監測
需求：篩選最佳培養基配方、接種密度，確保類器官形態均一、活性穩定（如干細胞類器官成球率、腫瘤類器官侵襲能力一致性）；
應用：通過明場動態成像，對比不同接種密度（如 1k / 孔、5k / 孔、10k / 孔）下類器官的成球時間、直徑分布，結合活細胞熒光染料（如 Calcein AM）評估活性，快速確定最優培養條件；
2. 活細胞動態追蹤類研究（如 CAR-T 細胞殺傷、干細胞分化）
需求：實時觀察細胞間相互作用（如 CAR-T 細胞與腫瘤類器官的結合、殺傷過程），或長時程追蹤細胞狀態變化（如干細胞向特定細胞類型分化）；
應用：
CAR-T 研究：用熒光標記 CAR-T 細胞（如 RFP 標記）和腫瘤類器官（GFP 標記），連續 24-48 小時監測 CAR-T 細胞向類器官的遷移、浸潤及類器官的形態崩解，量化殺傷效率；
Part.02
多重免疫熒光成像：細胞 “身份識別”，解析類器官功能異質性
類器官是 “功能異質性” 的細胞集合體（如乳腺類器官含 luminal 細胞、基底細胞，腎類器官含腎小管細胞、腎小球細胞），多重免疫熒光通過特異性標記 “功能標志物”，精準區分細胞類型、定位功能區域，適配需解析細胞組成與功能的場景。
 
核心技術特點
多標志物同時標記：可結合 4-6 種熒光染料（如 DAPI、GFP、Texas Red、CY5），分別標記細胞核、細胞骨架、特異性蛋白；
高特異性：依賴單克隆抗體與抗原的特異性結合（如用抗 E-cadherin 抗體標記上皮細胞連接，抗 MMP-14 抗體標記腫瘤侵襲細胞）；
類器官免疫化模型等：對細胞互作，空間位置關系等進行分析。
適配研究場景
 
1. 類器官細胞組成與功能驗證
需求：確認類器官是否分化出目標細胞類型，或驗證特定細胞的功能（如肝類器官的膽汁分泌、胰類器官的胰島素分泌）。
應用：
疾病建模與發病機制研究
模擬疾病狀態下類器官的細胞組成變化（如囊性纖維化（CF）腸道類器官的腔道結構異常、阿爾茨海默病腦類器官的神經元損傷）。
2.細胞間相互作用與信號通路研究
需求：觀察類器官中不同細胞間的信號傳遞（如腫瘤細胞與成纖維細胞的旁分泌作用），或特定信號通路的激活狀態（如 Wnt、Notch 通路）。
應用：
免疫治療藥物毒性對腸道類器官中免疫-上皮相互作用的影響
腫瘤類器官微環境分析：標記腫瘤細胞（抗 Her2 抗體）、基質細胞（抗 α-SMA 抗體）、免疫細胞（抗 CD45 抗體），解析腫瘤微環境中不同細胞的空間分布，探索相互作用機制；
Part.03
組織透明化 3D 成像：“穿透” 類器官，觀察深層結構與空間關系
當類器官體積較大（直徑 > 100μm）時，傳統熒光成像因 “光線散射” 無法穿透深層，導致 “表面清晰、內部模糊”。組織透明化技術通過 “消除細胞與基質的折射率差異”，實現全深度 3D 成像，適配需觀察類器官內部結構、空間分布的場景。
核心技術特點
 
簡單安全：1 步透明（20 分鐘室溫孵育），不破壞熒光信號；
高兼容性：適配 confocal、多光子、光片顯微鏡，可觀察 100-500μm 的類器官；
長期保存：透明后的類器官可在 - 20℃保存 6 個月，熒光信號損失 < 10%；
兼容多種標記策略：透明后可重新孵育抗體，進行二次標記。
適配研究場景
 
 
1. 類器官內部結構與空間形態分析
需求：觀察類器官的三維結構（如腸道類器官的絨毛 - 隱窩結構、腦類器官的神經管結構），或評估結構完整性（如損傷后修復情況）；
應用：
腸道類器官：透明后用 confocal 進行 Z-stack 掃描，重建 3D 結構，觀察隱窩區域的干細胞分布（Lgr5 + 細胞）與絨毛區域的分化細胞分布，量化隱窩數量與深度；
肺類器官：觀察透明后的類器官內部纖毛的分布與運動狀態，評估肺類器官的呼吸功能模擬能力；
2. 大體積類器官或類器官共培養的深層觀察
需求：觀察多細胞共培養類器官（如腫瘤類器官 + 成纖維細胞 + 免疫細胞）的深層細胞分布，或大體積類器官（如肝類器官球體）的內部功能區域；
應用：
腫瘤類器官共培養模型中，可能通過旁分泌信號增加藥物敏感性。
3. 類器官發育過程中的結構動態變化
需求：追蹤類器官從早期成球到成熟的內部結構變化；
應用：
類器官血管化：類器官透明化三維成像結果顯示，含iLSEP的類器官（HLBO）中形成了CD32b⁺/FVIII⁺分支狀的血管網絡，其結構與胎兒肝臟中的竇狀血管相似。
Part.04
多技術協同：構建類器官研究的完整解決方案
單一成像技術各有側重，只有協同應用才能覆蓋類器官研究的全需求：
動態追蹤 + 功能標記：長時程成像記錄類器官對藥物的動態響應，多重免疫熒光標記特定功能細胞，可分析藥物對不同細胞亞群的選擇性作用（如腫瘤類器官中藥物對腫瘤細胞與基質細胞的差異影響）；
功能標記 + 透明化成像：先通過多重免疫熒光定位功能細胞，再經透明化處理，用 3D 成像觀察功能細胞在類器官內部的空間分布（如肝類器官中肝細胞與膽管細胞的三維排列）；
動態追蹤 + 透明化成像：長時程監測類器官發育過程，定期取樣進行透明化 3D 成像，可完整還原從早期成球到成熟結構形成的空間變化（如腎類器官從細胞團到腎小管、腎小球的發育歷程）。

 
綜上，類器官研究的核心需求在于還原其 “類體內” 的 3D 特性與動態變化，而長時程動態成像、多重免疫熒光成像、組織透明化 3D 成像的協同應用，正是滿足這一需求的關鍵 —— 它們并非獨立技術，而是相互補充、相互賦能的完整解決方案，推動類器官研究從 “定性觀察” 走向 “定量、精準、系統的機制解析”。

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