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          免疫組化常見問題及對策

          瀏覽次數(shù):2783 發(fā)布日期:2017-8-31  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負

          免疫組織化學(xué)是應(yīng)用抗原和抗體結(jié)合的原理,檢測細胞內(nèi)多肽、蛋白質(zhì)等大分子物質(zhì)的分布。這種方法的特異性強、敏感度高、發(fā)展迅速、應(yīng)用廣泛,成為生物學(xué)和醫(yī)學(xué)眾多學(xué)科的重要研究手段。做免疫組化可能遇到許多問題,大體歸納起來,主要有非特異性著色﹑著色部位不對﹑假陽性﹑無陽性﹑陽性弱五大類以及其他一些小問題。現(xiàn)在就以上幾點分別說明。

          1、非特異性著色

          非特異性著色就是在理論著色區(qū)域外的著色,這種著色與背景是有區(qū)別性的。造成非特異性著色的原因主要有:

          1) 標(biāo)本原因,肝腎內(nèi)源性生物素含量高,與 SABC 結(jié)合導(dǎo)致非特異性著色,皮膚,肺組織膠原含量高,由于膠原帶負電荷,易吸附試劑導(dǎo)致非特異性著色。

          2) 切片干涸導(dǎo)致的邊緣效應(yīng)。

          3) 抗體濃度過高。

          4) 組織在處理中存在出血區(qū)或壞死區(qū)。

          5) 洗滌不充分。

          6) 顯色劑氧化,顯色時間長。

          解決方法 :

          1) 一抗應(yīng)做濃度梯度,選擇陽性強背景好,信躁比高的濃度,做為抗體實驗濃度。二抗?jié)舛群蜁r間一般不變。

          2) 穩(wěn)定實驗條件,嚴(yán)格按操作說明進行。

          3) 在實驗中應(yīng)保持切片始終處于水平狀態(tài)避免抗體流失,從而使切片使切片干涸。

          4) 在實驗中應(yīng)將試劑覆蓋面積大于切片面積

          5) 洗滌要充分,在背景十分深時,可用 37 ℃ 預(yù)溫的 PBS 浸泡

          6) 顯色劑的配制要防止氧化,尤其是顯色劑的配制是使用的用的容器,最好是滅菌過的。顯色時間應(yīng)在顯微鏡下嚴(yán)格控制。

          2、著色部位不對

          著色部位不對有三種情況。

          情況一 : 本是胞漿抗原,但實驗顯示結(jié)果卻在胞核有著色。

          原因及解決辦法:

          1) 修復(fù)時間過長,修復(fù)條件十分嚴(yán)苛,這時應(yīng)降低反應(yīng)強度

          2) 組織在二甲苯中靜置時間過長,這時應(yīng)更換標(biāo)本。

          3) 抗體中含有抗核蛋白抗體,這種情況已不多見。

          4) 標(biāo)本原因,標(biāo)本處理不慎會導(dǎo)致總在同一個地方出現(xiàn)著色。

          情況二 : 本是胞核抗原但顯示結(jié)果卻在胞漿。

          原因及解決辦法:

          1) 核抗原不易暴露,需用熱修復(fù)或延長修復(fù)時間來充分暴露。

          2) 蛋白質(zhì)是在胞漿翻譯的,再轉(zhuǎn)運至其他部位,所以出現(xiàn)漿著色也屬正常。

          情況三 : 本是胞膜抗原但顯示結(jié)果卻是在胞漿和胞膜都有著色。

          原因:蛋白質(zhì)是在胞漿翻譯的,再轉(zhuǎn)運至其他部位,處于轉(zhuǎn)運過程中的膜蛋白有可能顯示在胞漿。

          3、假陽性

          如不加一抗也有陽性信號主要原因是二抗引起的交叉,球蛋白是一個超家族,哺乳動物種屬來緣近的容易發(fā)生交叉反應(yīng)。如:羊抗兔抗體可與兔標(biāo)本中球蛋白反應(yīng),二抗羊抗小鼠也可與大鼠,小鼠中的球蛋白起反應(yīng),尤其在修復(fù)的情況下。

          4、無陽性

          原因:

          1) 抗原穩(wěn)定性問題,由于許多蛋白質(zhì)半衰期短易被破壞。

          2) 標(biāo)本制作過程中烤片時間過高時間過長,標(biāo)本制作不規(guī)范。

          3) 實驗中漏加試劑,實驗操作不規(guī)范。

          解決方法:

          1) 在標(biāo)本固定中應(yīng)該嚴(yán)格操作,做到及時固定。

          2) 在浸蠟時溫度不要太高,時間不要過長。一般 2小時×2次。烤片溫度一般在60℃左右2小時。

          3) 實驗中要嚴(yán)格按照實驗步驟操作。在所做指標(biāo)既有單抗又有多抗時,要將一抗和二抗嚴(yán)格對應(yīng)。

          5、陽性弱

          原因及解決方法:

          1) 一抗?jié)舛冗^低,解決方法:提高一抗?jié)舛?/p>

          2) 孵育時間過短,解決方法:按說明書嚴(yán)格操作

          3) 抗體流失,解決方法:補加抗體

          4) 顯色時間過短,解決方法:在顯微鏡下控制反應(yīng)時間

          5) 抗原修復(fù)方法不當(dāng),抗原修復(fù)有許多種方法,如:修復(fù)、消化,不消不修,尋找適合的方法是解決陽性弱的有效方法之一。

          6、其他問題及注意事項

          在實驗中尤其在修復(fù)后切片容易脫片。切片脫片的原因是什么?

          答:切片原因有以下幾點。 1). 切片沒有經(jīng)過防脫片處理。

           2). 在切片后沒有及時烤片。

           3). 修復(fù)時間過長。

          來源:BOSTER

           

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          標(biāo)簽: 免疫組化 著色 陽性
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