c-Fos蛋白在調控細胞病理生理過程中的作用及WB檢測時的注意事項
Fos超家族包括c-fos、fosB、fosL1和fosL2基因，這些基因編碼的亮氨酸拉鏈蛋白可以與Jun家族的蛋白二聚，形成轉錄因子復合物AP-1（Activator Protein-1，AP-1）。AP-1結合 TPA 反應元件和相關的 DNA 元件，如cAMP 反應元件，從而調節一系列生理過程，并在腫瘤的發生、發展中發揮重要作用。
圖1 c-Fos結構
c-fos是Fos家族被發現最早和研究多的成員。既往研究發現，c-fos 作為轉錄因子參與調控細胞的多種病理生理過程，和許多癌癥相關。c-fos的mRNA 和蛋白質通常是在刺激后瞬時便開始了轉錄和翻譯，因此被稱為即刻早期基因。
c-Fos的細胞內定位和轉錄活性受到嚴格調控，特別是轉錄活性可以通過各種絲氨酸和蘇氨酸的磷酸化來增強，包括MAPK p38、ERK1/2，以及ERK1/2活化的激酶Rsk1/2和IκB激酶對它的激活有效。c-Fos蛋白與細胞分化、增殖、存活以及受缺氧影響的組織穩態以及血管生成等關鍵功能有關；c-Fos也可以對包括膠原酶I在內的多種基因的轉錄起積極作用。
圖2 血清等因素刺激fos基因表達
那么，在用WB檢測c-Fos蛋白的時候，有哪些需要注意的條件呢？
01適當地處理激活c-Fos的表達
c-Fos蛋白在某些組織中穩定地表達，但受到不同的刺激時，在許多細胞中被快速瞬時誘導從而高度表達。在后一種情況下，c-Fos的積累在轉錄、mRNA周轉和蛋白質穩定性水平上受到控制。血清、生長因子、腫瘤促進劑、細胞因子、缺氧、營養物質不足和紫外線輻射等均會誘導c-Fos的表達。
a. 血清饑餓處理會抑制c-Fos的表達，添加FBS誘導可以促進c-Fos表達。TPA或者PMA處理激活信號通路。
b. c-Fos易被泛素降解，可嘗試MG132處理，以激活蛋白表達和抑制蛋白體降解。
圖3 HeLa，NIH/3T3，PC-12，血清饑餓過夜（1，3，5）或PMA/NGF+ MG-132處理（2，4，6）后檢測c-Fos
02根據實驗需要，提取核蛋白
當受到特殊處理影響，c-Fos蛋白在細胞質和細胞核的定位不固定。在靜止細胞中，c-Fos以極少的量存在于胞質溶膠中。細胞被刺激重新進入生長時，它經歷兩波表達，第一波在FBS誘導后7.5分鐘達到峰值。在這個階段，蛋白質是定位的內質網。內質網定位需要Tyr-10和Tyr-30的去磷酸化。第二波表達發生在誘導后約20分鐘，并在1小時達到峰值。在這個階段，蛋白質變成核定位。
圖4 血清刺激NIH-3T3細胞，c-fos在的SNF（可溶性核組分）中積累
03根據條帶趨勢分析辨認c-Fos結果
c-fos基因編碼62kDa蛋白（380個氨基酸），存在多個剪切異構體，最常見的剪切體分子量41kDa。c-Fos又可與強轉錄因子c-Jun形成異二聚體，從而形成AP-1復合物。
研究表明，c-Fos蛋白可以在細胞質與細胞核間穿梭。進入細胞核由至少兩種核定位信號控制：一種是最有可能利用核導入受體Impβ1的常規基本核定位信號，另一種是位于需要核導入轉運蛋白1的蛋白質N端部分的非常規核定位信號。有趣的是，這主要涉及單體c-Fos，并在與Jun蛋白異二聚時受到抑制。這表明二聚化是重要的，不僅對于活性AP-1轉錄復合物的形成，而且對于將它們保持在細胞核中發揮轉錄作用也是重要的，c-Fos/c-Jun復合體可影響細胞核的細胞內信號轉導。然而，c-Fos的核保留率因其Jun合作伙伴而異，c-Jun比JunB或JunD更強，這與各種c-Fos-Jun二聚體的相互作用強度相關。
從上面幾張圖我們已經可以發現，使用免疫原序列不同的抗體，即使是相同的細胞中，也可能識別c-Fos不同的異構體。更為特殊的是，某些抗體識別c-Fos與c-Jun結合成的二聚體，它的實測分子量可能遠不止41kDa或62kDa。
圖5 磷酸化c-Fos，二聚體表觀分子量約100kDa
部分相關產品：
參考文獻：
1. Nikoletta Szalóki，Jan Wolfgang Krieger，István Komáromi et al. Mol Cell Biol. （2015）35(21): 3785–3798
2. Hélène Gazon, Benoit Barbeau, Jean-Michel Mesnard et al. Hijacking of the AP-1 Signaling Pathway during Development of ATL. Frontiers in microbiology. (2018) 8:2686.
3. José María González, Ana Navarro-Puche, Berta Casar et al. Fast regulation of AP-1 activity through interaction of lamin A/C, ERK1/2, and c-Fos at the nuclear envelope. (2008) 183(4): 653–666.
4. Ce´cile E. Malnou, Fre´de´ rique Brockly, Cyril Favard et al. Heterodimerization with Different Jun Proteins Controls c-Fos Intranuclear Dynamics and Distribution. THE JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY VOL. （2009）285（9）:6552–6562.
圖1 c-Fos結構
c-fos是Fos家族被發現最早和研究多的成員。既往研究發現，c-fos 作為轉錄因子參與調控細胞的多種病理生理過程，和許多癌癥相關。c-fos的mRNA 和蛋白質通常是在刺激后瞬時便開始了轉錄和翻譯，因此被稱為即刻早期基因。
c-Fos的細胞內定位和轉錄活性受到嚴格調控，特別是轉錄活性可以通過各種絲氨酸和蘇氨酸的磷酸化來增強，包括MAPK p38、ERK1/2，以及ERK1/2活化的激酶Rsk1/2和IκB激酶對它的激活有效。c-Fos蛋白與細胞分化、增殖、存活以及受缺氧影響的組織穩態以及血管生成等關鍵功能有關；c-Fos也可以對包括膠原酶I在內的多種基因的轉錄起積極作用。
圖2 血清等因素刺激fos基因表達
那么，在用WB檢測c-Fos蛋白的時候，有哪些需要注意的條件呢？
01適當地處理激活c-Fos的表達
c-Fos蛋白在某些組織中穩定地表達，但受到不同的刺激時，在許多細胞中被快速瞬時誘導從而高度表達。在后一種情況下，c-Fos的積累在轉錄、mRNA周轉和蛋白質穩定性水平上受到控制。血清、生長因子、腫瘤促進劑、細胞因子、缺氧、營養物質不足和紫外線輻射等均會誘導c-Fos的表達。
a. 血清饑餓處理會抑制c-Fos的表達，添加FBS誘導可以促進c-Fos表達。TPA或者PMA處理激活信號通路。
b. c-Fos易被泛素降解，可嘗試MG132處理，以激活蛋白表達和抑制蛋白體降解。
圖3 HeLa，NIH/3T3，PC-12，血清饑餓過夜（1，3，5）或PMA/NGF+ MG-132處理（2，4，6）后檢測c-Fos
02根據實驗需要，提取核蛋白
當受到特殊處理影響，c-Fos蛋白在細胞質和細胞核的定位不固定。在靜止細胞中，c-Fos以極少的量存在于胞質溶膠中。細胞被刺激重新進入生長時，它經歷兩波表達，第一波在FBS誘導后7.5分鐘達到峰值。在這個階段，蛋白質是定位的內質網。內質網定位需要Tyr-10和Tyr-30的去磷酸化。第二波表達發生在誘導后約20分鐘，并在1小時達到峰值。在這個階段，蛋白質變成核定位。
圖4 血清刺激NIH-3T3細胞，c-fos在的SNF（可溶性核組分）中積累
03根據條帶趨勢分析辨認c-Fos結果
c-fos基因編碼62kDa蛋白（380個氨基酸），存在多個剪切異構體，最常見的剪切體分子量41kDa。c-Fos又可與強轉錄因子c-Jun形成異二聚體，從而形成AP-1復合物。
研究表明，c-Fos蛋白可以在細胞質與細胞核間穿梭。進入細胞核由至少兩種核定位信號控制：一種是最有可能利用核導入受體Impβ1的常規基本核定位信號，另一種是位于需要核導入轉運蛋白1的蛋白質N端部分的非常規核定位信號。有趣的是，這主要涉及單體c-Fos，并在與Jun蛋白異二聚時受到抑制。這表明二聚化是重要的，不僅對于活性AP-1轉錄復合物的形成，而且對于將它們保持在細胞核中發揮轉錄作用也是重要的，c-Fos/c-Jun復合體可影響細胞核的細胞內信號轉導。然而，c-Fos的核保留率因其Jun合作伙伴而異，c-Jun比JunB或JunD更強，這與各種c-Fos-Jun二聚體的相互作用強度相關。
從上面幾張圖我們已經可以發現，使用免疫原序列不同的抗體，即使是相同的細胞中，也可能識別c-Fos不同的異構體。更為特殊的是，某些抗體識別c-Fos與c-Jun結合成的二聚體，它的實測分子量可能遠不止41kDa或62kDa。
圖5 磷酸化c-Fos，二聚體表觀分子量約100kDa
部分相關產品：
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No |
Name |
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c-Fos 抗體 (E-8) |
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c-Fos 抗體 (D-1) |
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c-Fos 抗體 (6-2H-2F) |
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c-Fos 抗體 (C-10) |
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c-Fos (E2I7R) XP® Rabbit mAb |
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c-Fos (9F6) Rabbit mAb |
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c-Fos (E7L5L) Mouse mAb |
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c-Fos Antibody |
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MG-132 |
參考文獻：
1. Nikoletta Szalóki，Jan Wolfgang Krieger，István Komáromi et al. Mol Cell Biol. （2015）35(21): 3785–3798
2. Hélène Gazon, Benoit Barbeau, Jean-Michel Mesnard et al. Hijacking of the AP-1 Signaling Pathway during Development of ATL. Frontiers in microbiology. (2018) 8:2686.
3. José María González, Ana Navarro-Puche, Berta Casar et al. Fast regulation of AP-1 activity through interaction of lamin A/C, ERK1/2, and c-Fos at the nuclear envelope. (2008) 183(4): 653–666.
4. Ce´cile E. Malnou, Fre´de´ rique Brockly, Cyril Favard et al. Heterodimerization with Different Jun Proteins Controls c-Fos Intranuclear Dynamics and Distribution. THE JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY VOL. （2009）285（9）:6552–6562.
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