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          新型成像技術快速解析細胞分布與腫瘤異質性

          瀏覽次數:309 發布日期:2025-11-7  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負

          PRISM(Profiling of RNA In-situ through Single-round iMaging)是一種新型的高復用空間RNA成像技術,它通過顏色強度條形碼策略,在傳統熒光顯微鏡下實現單輪成像即可檢測多達64種RNA轉錄本。該方法利用滾動圈擴增(RCA)和競爭性雜交原理,將熒光信號的強度分級與多通道光譜結合,克服了傳統顯微鏡僅能分辨有限通道的瓶頸。PRISM技術無需復雜的流體學設備,整個工作流程可在一天內完成,顯著降低了空間轉錄組學的技術門檻。研究團隊在多個組織樣本中驗證了PRISM的實用性,包括小鼠胚胎發育圖譜、人類肝癌微環境分析以及小鼠腦組織的3D成像,揭示了細胞類型分布、亞細胞RNA定位及腫瘤異質性等關鍵生物學信息。該技術的高通量、高分辨率和易用性,為生物醫學研究提供了強有力的工具。

          本研究的核心貢獻者包括Tianyi Chang、Shihui Zhao、Kunyue Deng、Zhizhao Liao、Mingchuan Tang、Yanxi Zhu、Wuji Han、Chenxi Yu、Wenyi Fan、Mengcheng Jiang、Guanbo Wang、Dongfang Liu、Jirun Peng、Yuhong Pang、Peng Fei、Jianbin Wang、Chunhong Zheng和Yanyi Huang。研究成果以論文“High-plex spatial RNA imaging in one round with conventional microscopes using color-intensity barcodes”的形式,于2025年10月在《Nature Biotechnology》上發表。

          重要發現
          01PRISM技術原理與工作流程
          PRISM技術的核心在于通過顏色強度條形碼對RNA轉錄本進行編碼。每個靶基因的padlock探針包含多個片段,每個片段對應一個熒光通道(如Texas Red、Alexa Fluor 488、Cy5、Cy3),并通過混合標記與未標記成像探針的比例,實現熒光強度的分級量化。這種設計使得在有限的光譜通道內(如3-4個通道),通過強度組合可產生大量可區分的條形碼。例如,將三個通道分為五級強度(0-4/5),并結合第四個通道的雙級強度,理論編碼容量可達64種基因。關鍵創新是半徑向量過濾策略,確保條形碼在顏色空間中的角度分散,避免因擴增產物大小不均導致的信號混淆。

          工作流程從padlock探針與靶RNA結合開始,經過連接和滾動圈擴增,產生大量相同的條形碼序列。隨后,通過單輪混合成像探針染色,利用競爭性雜交使每個片段按預設比例顯示熒光強度。成像后,信號點被提取并投影到顏色空間,通過高斯擬合或手動邊界劃分進行條形碼解碼。該方法在傳統顯微鏡下即可實現,無需多輪反應,減少了樣本變形和配準誤差。實驗驗證顯示,PRISM的解碼準確率超過95%,且對組織自發熒光有良好魯棒性。

          02實驗驗證與多組織應用
          PRISM技術在小鼠腦組織、胚胎和人類肝癌樣本中進行了廣泛驗證。在小鼠腦冠狀切片中,使用30個基因 panel,PRISM成功識別了71,435個細胞,包括興奮性神經元、抑制性神經元、少突膠質細胞、星形膠質細胞和小膠質細胞等類型,并揭示了腦區的精細結構。

          在小鼠胚胎發育研究中,PRISM生成了E12.5至E14.5階段的3D細胞圖譜,涵蓋了超過425萬個細胞,分為12種主要類型。研究揭示了神經系統、呼吸系統、運動系統和消化系統等器官的發育動態,例如脊髓中Hoxb8、Robo2和Stmn2基因的共表達,以及肢體發育中Wnt5a+和Tbx5+細胞的空間相關性。細胞互作分析顯示,肝細胞中94%存在近距離相互作用,表明胚胎期肝小葉結構的早期形成。

          在人類肝癌樣本中,PRISM使用31個基因 panel(包括HBV核心蛋白編碼序列),分析了約120萬個細胞,識別出32種細胞類型,如腫瘤細胞、癌癥相關成纖維細胞(CAFs)和免疫細胞亞型。空間分析揭示了腫瘤微環境的異質性,例如CAFs形成物理屏障阻礙免疫細胞浸潤,以及B細胞在3D空間中形成淋巴樣網絡。這些發現為肝癌免疫治療提供了新見解。

          033D成像與亞細胞分析
          PRISM技術兼容厚組織3D成像,在小鼠100微米厚腦切片中,通過折射率匹配和脂質去除步驟,實現了皮層、下丘腦、丘腦和海馬體等區域的大規模RNA profiling。細胞分割和分類顯示,PRISM數據與單細胞轉錄組數據高度相關。亞細胞分析揭示了RNA極性分布和核內富集異質性,例如下丘腦中Pmch+細胞呈現明顯RNA極性,而海馬體少突膠質細胞顯示更高核RNA富集。這些結果為細胞狀態研究增添了新維度。

          創新與亮點
          PRISM技術的核心創新在于突破了傳統光學成像的多路復用限制。常規熒光顯微鏡受限于光譜重疊,通常只能分辨4-5個通道,而PRISM通過顏色強度分級,將編碼容量提升至64重,無需超分辨率或專用設備。這種“單輪成像”策略避免了多輪標記-剝離反應帶來的樣本損傷和配準難題,顯著提高了實驗效率和可重復性。此外,PRISM采用半徑向量過濾優化條形碼區分度,并通過調整熒光探針比例適應不同光學系統,展現了高度的靈活性和魯棒性。

          在生物醫學價值方面,PRISM降低了空間轉錄組學的技術門檻,使普通實驗室也能開展高通量空間RNA分析。它成功應用于胚胎發育、腫瘤微環境和神經科學等多個領域,提供了細胞互作、亞細胞定位和3D結構的全新見解。例如,在肝癌研究中,PRISM揭示了CAFs的屏障作用和免疫細胞空間異質性,為精準醫療提供了潛在靶點。技術開源性進一步促進了廣泛采用,有望推動分子病理學和細胞圖譜構建的普及。

          總結與展望
          PRISM技術通過顏色強度條形碼實現了高效、易用的空間RNA成像,為生物醫學研究提供了強大工具。它克服了傳統顯微鏡的通道限制,并在多種組織類型中驗證了其可靠性和廣泛應用潛力。未來,PRISM可通過結合光激活染料或膨脹顯微鏡進一步提升復用能力和分辨率。雖然目前靈敏度較低(約10%),但通過增加靶基因探針數量有望改善。隨著技術優化和社區推廣,PRISM有望成為空間生物學的基礎技術,推動疾病機制研究和臨床診斷創新。

          論文信息
          聲明:本文僅用作學術目的。
          Chang T, Zhao S, Deng K, Liao Z, Tang M, Zhu Y, Han W, Yu C, Fan W, Jiang M, Wang G, Liu D, Peng J, Pang Y, Fei P, Wang J, Zheng C, Huang Y. High-plex spatial RNA imaging in one round with conventional microscopes using color-intensity barcodes. Nat Biotechnol. 2025 Oct 30.

          DOI:10.1038/s41587-025-02883-7.

          發布者:羅輯技術(武漢)有限公司
          聯系電話:13260667811
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