新型多模態(tài)顯微鏡實(shí)現(xiàn)毫米級(jí)視場下以微米級(jí)空間分辨率多模態(tài)成像
瀏覽次數(shù):128 發(fā)布日期:2025-12-2
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近日,一項(xiàng)突破性研究成功開發(fā)出一種新型多模態(tài)顯微鏡——multiScope,能夠同時(shí)對清醒小鼠的全腦皮層進(jìn)行鈣離子(Ca2+)熒光成像和血流動(dòng)力學(xué)觀測。該顯微鏡整合了寬場Ca2+熒光顯微鏡、光學(xué)分辨率光聲顯微鏡(OR-PAM)以及激光散斑對比成像(LSCI)三種成像模式,首次實(shí)現(xiàn)了在毫米級(jí)視場下以微米級(jí)空間分辨率和高達(dá)4赫茲的時(shí)間速度,無創(chuàng)捕獲神經(jīng)元放電、總血紅蛋白濃度和血流速度的動(dòng)態(tài)變化。通過內(nèi)源性生物標(biāo)志物(如GCaMP6f和血紅蛋白),研究團(tuán)隊(duì)在動(dòng)物模型中驗(yàn)證了多參數(shù)成像能力,并針對麻醉和電擊誘導(dǎo)癲癇等腦刺激開展了全局與局部神經(jīng)血管耦合分析,為揭示大腦功能與血管活動(dòng)的復(fù)雜關(guān)聯(lián)提供了全新工具。
本研究成果由Wei Qin、Tingting Li、Linyang Li、Tian Jin、Baochen Li、Weizhi Qi、Yifan Chen、Haoyang Li、Shijie Ruan、Heng Guo、Xiao Liang和Lei Xi共同完成,論文題為“A cortex-wide multimodal microscope for simultaneous Ca2+ and hemodynamic imaging in awake mice”,于10月在《Nature Communications》期刊在線發(fā)表。
重要發(fā)現(xiàn)
01多模態(tài)顯微鏡的集成設(shè)計(jì)
研究團(tuán)隊(duì)核心貢獻(xiàn)在于成功將三種互補(bǔ)的光學(xué)成像技術(shù)——寬場Ca2+熒光顯微鏡、光學(xué)分辨率光聲顯微鏡(OR-PAM)和激光散斑對比成像(LSCI)集成于單一平臺(tái)。這一設(shè)計(jì)克服了傳統(tǒng)成像模式間時(shí)空分辨率不匹配的難題。multiScope采用無限遠(yuǎn)校正光學(xué)結(jié)構(gòu),通過預(yù)物鏡旋轉(zhuǎn)掃描引擎實(shí)現(xiàn)OR-PAM與寬場成像的兼容性,其視場直徑達(dá)8.6毫米,可覆蓋小鼠全腦皮層。在成像性能方面,經(jīng)模型重建后,寬場成像和光聲顯微鏡的平均空間分辨率分別達(dá)到10.7±3.1微米和7.1±0.8微米,最高成像速度提升至4赫茲。
02關(guān)鍵技術(shù)突破:超快光聲顯微鏡
為解決激光掃描式OR-PAM與寬場成像間的時(shí)間分辨率鴻溝,團(tuán)隊(duì)提出復(fù)合策略:首先通過超快激光調(diào)制實(shí)現(xiàn)均勻旋轉(zhuǎn)掃描,消除中心區(qū)域過采樣導(dǎo)致的熱損傷;其次開發(fā)自適應(yīng)光聲激發(fā)方案,僅在血管區(qū)域觸發(fā)激光脈沖,降低平均功耗;最后結(jié)合稀疏采樣與基于Transformer的深度學(xué)習(xí)重建算法,在保證圖像質(zhì)量的同時(shí)將采樣點(diǎn)減少至傳統(tǒng)方法的十分之一。實(shí)驗(yàn)表明,該策略使OR-PAM在長期成像(>30分鐘)中避免組織損傷,并維持血管結(jié)構(gòu)與功能信息的完整性。
03神經(jīng)血管耦合的動(dòng)態(tài)觀測
在麻醉實(shí)驗(yàn)中,multiScope成功捕捉到異氟醚誘導(dǎo)的神經(jīng)活動(dòng)抑制與血流動(dòng)力學(xué)響應(yīng)分離現(xiàn)象:高頻信號(hào)(0.04-0.1赫茲)的跨模態(tài)相關(guān)性在麻醉期間顯著降低,而低頻信號(hào)(0.005-0.02赫茲)關(guān)聯(lián)性保持穩(wěn)定,提示神經(jīng)血管耦合的頻域特異性調(diào)控機(jī)制。在癲癇模型中,電刺激后鈣信號(hào)陡升,血紅蛋白濃度與血流速度在約1秒延遲后同步增加,但部分相鄰小血管呈現(xiàn)相反響應(yīng)模式。通過像素級(jí)相關(guān)性分析,研究發(fā)現(xiàn)兩類血管群體存在負(fù)相關(guān)關(guān)系,可能反映動(dòng)脈與硬腦膜血管的不同調(diào)控機(jī)制。
04高分辨率功能成像驗(yàn)證
借助轉(zhuǎn)基因小鼠(Thy1-GCaMP6f),團(tuán)隊(duì)在清醒動(dòng)物中實(shí)現(xiàn)了全腦皮層神經(jīng)活動(dòng)與血流動(dòng)力學(xué)的同步記錄。通過超像素聚類分析,將多維數(shù)據(jù)壓縮為時(shí)空信號(hào)序列,清晰展示跑步、理毛等行為狀態(tài)下神經(jīng)血管的快速協(xié)同變化。值得注意的是,OR-PAM對血紅蛋白濃度變化的檢測雖受聲學(xué)靈敏度限制,但其單血管一致性優(yōu)于LSCI的血流速度信號(hào),凸顯多模態(tài)互補(bǔ)優(yōu)勢。
創(chuàng)新與亮點(diǎn)
01突破成像速度與兼容性瓶頸
本研究核心創(chuàng)新在于解決了旋轉(zhuǎn)掃描式OR-PAM固有的非均勻采樣問題。傳統(tǒng)旋轉(zhuǎn)掃描因極坐標(biāo)采樣機(jī)制導(dǎo)致中心區(qū)域脈沖過度累積,不僅降低成像效率,還可能引發(fā)光熱損傷。團(tuán)隊(duì)通過激光脈沖的像素級(jí)調(diào)制、基于血管分割的自適應(yīng)激發(fā)策略,以及稀疏采樣重建算法,將OR-PAM的時(shí)間分辨率提升至與寬場成像匹配的4赫茲,同時(shí)將中心區(qū)域平均功率密度降低34%。這種“光-聲-算”一體化設(shè)計(jì)為多模態(tài)集成樹立了新范式。
02全腦尺度單血管級(jí)分辨率成像
multiScope首次在毫米級(jí)視場下實(shí)現(xiàn)微米級(jí)精度的神經(jīng)-血流同步成像,其空間分辨率(7.1-10.7微米)足以分辨皮層表面細(xì)小血管。相較于功能磁共振成像(fMRI)或功能超聲等宏觀技術(shù),該平臺(tái)兼具高時(shí)空分辨率與內(nèi)源性對比度優(yōu)勢,可直接觀測神經(jīng)活動(dòng)觸發(fā)的血管舒縮動(dòng)態(tài)。例如在癲癇實(shí)驗(yàn)中,相鄰血管呈現(xiàn)相反的血紅蛋白濃度變化,此類微尺度現(xiàn)象在低分辨率成像中易被忽略。
03生物醫(yī)學(xué)應(yīng)用價(jià)值凸顯
該技術(shù)為神經(jīng)血管耦合研究提供了全新視角。在基礎(chǔ)科研層面,能夠解析阿爾茨海默病、帕金森病等神經(jīng)退行性疾病中神經(jīng)活動(dòng)與血流調(diào)節(jié)的失關(guān)聯(lián)機(jī)制;在臨床前研究中,可用于評(píng)估麻醉藥物對腦功能的長效影響,或癲癇發(fā)作的血管響應(yīng)規(guī)律。此外,平臺(tái)兼容轉(zhuǎn)基因熒光指標(biāo)(如jGCaMP系列)與血流定位成像,未來可通過高數(shù)值孔徑物鏡進(jìn)一步實(shí)現(xiàn)毛細(xì)血管級(jí)觀測,推動(dòng)細(xì)胞水平神經(jīng)血管耦合機(jī)制的破解。
總結(jié)與展望
multiScope多模態(tài)顯微鏡通過創(chuàng)新性地融合寬場熒光、光聲與散斑成像技術(shù),成功突破了全腦尺度下神經(jīng)-血流同步成像的時(shí)空分辨率限制,為理解大腦功能提供了前所未有的多參數(shù)視角。其技術(shù)亮點(diǎn)不僅在于解決了光聲顯微鏡的速度瓶頸,更通過內(nèi)源性對比劑實(shí)現(xiàn)了清醒動(dòng)物的長期動(dòng)態(tài)觀測,規(guī)避了外源標(biāo)記的干擾。未來,該平臺(tái)可通過結(jié)合更高靈敏度的超聲探測器、新型基因編碼鈣指示劑(如jGCaMP7),進(jìn)一步拓展至神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞互作研究或靈長類模型應(yīng)用。隨著光學(xué)設(shè)計(jì)與算法持續(xù)優(yōu)化,這種多模態(tài)成像策略有望成為腦科學(xué)領(lǐng)域的標(biāo)準(zhǔn)工具,推動(dòng)從微觀細(xì)胞事件到全腦網(wǎng)絡(luò)水平的跨尺度整合,最終為腦血管疾病的精準(zhǔn)診療提供新范式。
論文信息
聲明:本文僅用作學(xué)術(shù)目的。
Qin W, Li T, Li L, Jin T, Li B, Qi W, Chen Y, Li H, Ruan S, Guo H, Liang X, Xi L. A cortex-wide multimodal microscope for simultaneous Ca2+ and hemodynamic imaging in awake mice. Nat Commun. 2025 Oct 23;16(1):9364.
DOI:10.1038/s41467-025-64393-z.