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          ELISA酶聯免疫吸附劑測定的分類和實驗流程

          瀏覽次數:3260 發布日期:2023-1-30  來源:本站 僅供參考,謝絕轉載,否則責任自負
          定義:

          酶聯免疫吸附測定(簡寫ELISA)指將可溶性的抗原或抗體結合到聚苯乙烯等固相載體上,利用抗原抗體特異性結合進行免疫反應的定性和定量檢測方法。
          常用的ELISA可以分為五大類:直接ELISA、間接ELISA、夾心ELISA、競爭ELISA、競爭抑制ELISA。其他的ELISA都由這五類組合衍生。
          所有的ELISA基本由基礎的幾個步驟組合而成:將抗原或抗體吸附到固相載體上;加入待檢樣品以及后續試劑;溫育;洗滌去掉游離未結合的反應物;加入酶檢測底物;結果的判讀

          分類:

          1.直接ELISA

          將抗原按一定的比例稀釋,包被到固相載體上,加入稀釋好的特異性的酶標抗體,孵育后加入底物顯色并判讀結果。直接ELISA中只經過了一步信號放大,所以其靈敏度不是很高

          2.間接ELISA

          間接ELISA與直接ELISA不同的是,與包被好的抗原結合的是非酶標抗體,另外再引入第二種抗體(即二抗)。二抗是經過酶標的,它可以與第一種抗體特異性結合,最后加入底物顯色并判讀結果。在檢測抗體的效價、血清的效價以及單克隆抗體的篩選過程中,間接ELISA都是非常重要的實驗過程。

          3.夾心ELISA

          3.1直接夾心ELISA

          3.1.1雙抗體夾心ELISA           

          將第一種抗體(捕獲抗體)包被在固相載體上,封閉后加入待檢抗原,溫育后加入第二種抗體(檢測抗體),捕獲抗體和檢測抗體可以是針對不同表位的兩種單抗,也可以是針對同一抗原的一種單抗與一種多抗,但是檢測抗體需要經過酶標。

          3.1.2雙抗原夾心ELISA

          原理和操作與雙抗體夾心ELISA基本相同,不同的是包被的是抗原,待檢對象是抗體,然后加入酶標抗原,再加底物顯色。雙抗原夾心ELISA利用特異性的抗原代替酶標二抗,所以特異性比間接法更好。另外,由于間接ELISA中使用的二抗一般只能識別IgG,而雙抗原夾心ELISA中任何類似的免疫球蛋白都可以被檢測出,因此,雙抗原夾心ELISA比間接ELISA也更靈敏。

          3.2間接夾心ELISA

          間接夾心ELISA是基于兩種不同種屬來源的抗體的夾心ELISA,其原理是將一種種屬來源的特異性抗體包被于固相載體上(作為捕獲抗體),封閉,加入待檢抗原,溫育,洗滌后加入另一種種屬來源的特異性抗體(非酶標,作為檢測抗體),最后加入酶標二抗(特異性識別檢測抗體),再加底物顯色。與直接雙抗夾心ELISA相比,其中引入了特異性識別檢測抗體的酶標二抗,相當于整個體系的信號增加了一步放大系統,最終的結果比直接雙抗夾心ELISA更靈敏。

          4.競爭ELISA

          將特異性抗體吸附于固相載體表面,經洗滌后分成兩組:一組加酶標記抗原和被測抗原的混合液;而另一組只加酶標記抗原,再經孵育洗滌后加底物顯色,這兩組底物降解量之差,即為所要測定的未知抗原的量。這種方法所測定的抗原只要有一個結合部位即可,因此,對小分子抗原如激素和藥物之類的測定常用此法。

          5.競爭抑制ELISA

          預先將抗原包被在固相載體上,實驗時加入稀釋好的待檢抗原(或抗體),然后依次加入特異性的抗體以及此抗體對應的酶標二抗。待檢標本中的抗原(或抗體)就和預制備體系中固相載體上結合的抗原(或抗體)競爭結合特異性的抗體(或固相載體上結合的抗原)。洗掉被競爭的特異性抗體,最后加底物顯色。最終顯色的結果與待檢抗原(或抗體)量呈反比。

          實驗材料:

          96孔高吸附酶標板[NEST]            10μL/200μL/1000μL吸頭[NEST]
          單通道移液槍、多通道移液槍        微量離心管[NEST]
          顯色液(A/B液)                  15/50ml離心管[NEST]
          洗液(PBST)                      終止液(H2SO4)
          BSA蛋白                           稀釋液(PBS)
          包被液(CB)                      全波段酶標儀
          恒溫箱

          實驗流程:

          以使用比較廣泛的間接ELISA為例,簡述實驗過程

          1.抗原包被:

          將對應抗原用CB稀釋至1ug/ml,加入96孔酶標板孔中,每孔100ul,4℃包被過夜,之后進行下一步驟。若實驗時間比較緊張,包被后可放置恒溫箱內,37℃包被3h后即可進行下一步操作。

          2.洗板:

          將酶標板內的包被液甩干,用洗液(PBST——0.2%的吐溫20 PBS)清洗酶標板2次,并拍干板內液體,使之無余液殘留。

          3.封閉:

          用PBS充分溶解BSA蛋白制備成封閉液(體積比為5~10%),將封閉液加入酶標板孔中,每孔150ul,恒溫箱37℃封閉1h。若實驗時間安排充裕,可在4℃條件下封閉過夜。

          【若抗原內含有偶聯BSA分子,則更換封閉成分,可用羊血清代替】

          4.洗板:

          將酶標板內的封閉液液甩干,用洗液(PBST)清洗酶標板2次,并拍干板內液體,使之無余液殘留。

          【若暫無使用需求,可將包被后的酶標板放置-20℃條件下儲存,需要時解凍使用即可。】

          5.一抗:

          用PBS稀釋液將待檢樣品(含有對應抗原的抗體)按需求稀釋,再將稀釋后樣本加入包被好的酶標板中,每孔100ul,陰性對照孔加入100ulPBS稀釋液,在恒溫箱中37℃孵育1h。

          6.洗板:

          將酶標板內的一抗甩干,用洗液(PBST)清洗酶標板3次,并拍干板內液體,使之無余液殘留。

          7.二抗:

          用PBS稀釋液按照說明,稀釋對應的酶標二抗,將稀釋完成的二抗加入一抗孵育完成的酶標板中,每孔100ul,恒溫箱37℃孵育30min。

          8.洗板:

          將酶標板內的二抗甩干,用洗液(PBST)清洗酶標板4次,并拍干板內液體,使之無余液殘留。

          9.顯色:

          將顯色液A/B液等體積混合,配置成顯色液,加入二抗孵育完成的酶標板中,每孔100ul,恒溫箱避光37℃反應5~10min。

          【顯色液現配現用,不可提前配置】

          10.終止與讀數:

          顯色完成后,無須丟棄顯色液,直接加入終止液(H2SO4)終止反應,每孔50ul,隨即轉移至全波段酶標儀450nm單波長度數,或450nm/620nm雙波長讀數,讀書完成后處理數據。

          使用到的NEST產品:

          96孔高吸附酶標板[NEST]            10μL/200μL/1000μL吸頭[NEST]

          微量離心管[NEST]                  15/50ml離心管[NEST]
          發布者:無錫耐思生命科技股份有限公司
          聯系電話:0510-68006788
          E-mail:info@cell-nest.com

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