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          數(shù)字PCR在德國漢堡大學(xué)開發(fā)單細胞的基因編輯低頻脫靶事件的應(yīng)用

          瀏覽次數(shù):1969 發(fā)布日期:2021-11-22  來源:本站 僅供參考,謝絕轉(zhuǎn)載,否則責(zé)任自負

          CRISPR-Cas9技術(shù)徹底改變了基礎(chǔ)生物研究和應(yīng)用生物技術(shù)的許多領(lǐng)域。但在臨床基因治療實施中脫靶效應(yīng)的檢測仍然存在難題。德國漢堡大學(xué)-艾本多夫醫(yī)學(xué)中心(UKE)干細胞移植、細胞和基因治療研究所的學(xué)者們近日在知名雜志《Molecular Therapy》上發(fā)表“LATE–a novel sensitive cell-based assay for the study of CRISPR/Cas9-related long-term adverse treatment effects”的文章,建立了稱為LATE(長期不良治療效果鑒定檢測)的新型檢測方法,該方法使用Stilla naica®微滴芯片數(shù)字PCR系統(tǒng)檢測低頻的脫靶事件,且有助于分析Cas9脫靶切割效應(yīng)的影響,并可在單細胞層面進行評估。
           


           

          為了證明LATE方法有助于檢測Cas9脫靶切割后的功能影響,研究人員進行了小規(guī)模的原理驗證實驗:明星基因TP53基因敲除后會導(dǎo)致細胞表現(xiàn)出相對生長優(yōu)勢,這是主要的致瘤性標志之一,因此可以作為驗證“LATE”檢測脫靶能力的指示。本文選取TP53進行CRISPR靶向?qū)嶒灒⑥D(zhuǎn)染到有限稀釋后的原代人類新生兒包皮成纖維NUFF細胞中,通過“LATE”方法重復(fù)檢測到低頻(<0.5%)生長促進事件,這一結(jié)果證明了即使在低起始細胞數(shù)的情況下,LATE檢測也具有高靈敏度,并且可以對單個細胞進行評估。
           

          圖 1. LATE檢測原理
           

          LATE檢測的原理包括 (1)用編碼熒光蛋白、設(shè)計的核酸酶(Cas9)和gRNA的慢病毒載體轉(zhuǎn)導(dǎo)原代人類新生兒包皮成纖維細胞 (NUFF),(2) 使用流式細胞術(shù)分析轉(zhuǎn)導(dǎo)率并連續(xù)監(jiān)控長達10周,(3)讀取結(jié)果,隨著轉(zhuǎn)導(dǎo)細胞數(shù)量的增加,作為基因組編輯效應(yīng)的細胞獲得生長優(yōu)勢
           

          在這一過程中,“LATE”讀取到的陽性結(jié)果(獲得生長優(yōu)勢的細胞)會不會由TP53以外的基因被“脫靶敲除”引起,或者是序列存在其他的突變,例如插入誘變從而導(dǎo)致細胞獲得生長優(yōu)勢呢?為了研究“LATE”檢測的陽性結(jié)果與TP53插入缺失之間的聯(lián)系,研究人員設(shè)計了GEF-dPCR(gene-editing frequency digital PCR)實驗,即Drop-Off分析方法,該方法可以量化gRNA結(jié)合位點以及脫靶位點的插入缺失頻率。
           


           

          圖2. NUFF細胞獲得的生長優(yōu)勢與TP53中的插入/缺失頻率相關(guān) (A)TP53外顯子4片段和GEF-dPCR中使用的FAM、HEX標記探針的示意圖。(B) TP53插入/缺失頻率,數(shù)據(jù)由GFR-dPCR測量獲得。(C) 脫靶TP53插入/缺失頻率,由GEF-dPCR測量獲得。
           

          對于TP53 gRNA結(jié)合位點的檢測,GEF-dPCR使用兩個雙標記水解探針,一個HEX標記探針與遠離gRNA識別序列的區(qū)域結(jié)合,易發(fā)生插入缺失的位點設(shè)計FAM標記的探針(圖2A)。

          文中使用Stilla naica®微滴芯片數(shù)字PCR系統(tǒng)進行GFR-dPCR方法檢測,實驗方法詳見原文第12頁。
           


           

          隨后進行Stilla naica®微滴芯片數(shù)字PCR系統(tǒng)檢測,結(jié)果顯示隨著時間的推移,TP53插入缺失的頻率隨之增加,轉(zhuǎn)導(dǎo)后第7天插入缺失率為1%–22%,在52天后達到44%–85%的峰值,該變化趨勢和細胞獲得生長優(yōu)勢的趨勢一致。(圖2B)
           

          研究人員還對TP53脫靶位點的插入缺失頻率進行了檢測(圖2C)。上述dPCR檢測結(jié)果也與NGS測序方法和RGB熒光標記方法一致,從而說明“LATE”能夠檢測TP53介導(dǎo)的gRNA的不良脫靶效應(yīng),但這些gRNA并沒有被常用的在線預(yù)測工具標記為“危險信號”。
           

          隨后,作者還驗證了“LATE”可用于任何類型的設(shè)計核酸酶以及不同的CRISPR/Cas變體,并且可以擴展用于其他細胞類型,尤其是高度相關(guān)的原代hMSC。因此,“LATE”實驗方案可用于驗證特定細胞類型中特定設(shè)計核酸酶的脫靶效應(yīng)的影響。
           

          圖3:LATE檢測可應(yīng)用于hMSCs和h-TERT永生化細胞
           

          綜上,“LATE”可以作為一種簡單、快速和經(jīng)濟的技術(shù)手段,用來評估CRISPR/Cas系統(tǒng)帶來的生理“副作用”影響,輔助臨床前的安全性研究,是對基于NGS的全基因組脫靶檢測方法的有效補充,特別是補充了流式和數(shù)字PCR的檢測結(jié)果。
           

          原文:https://doi.org/10.1016/j.omtm.2021.07.004
           

          期刊介紹:《Molecular Therapy》是美國基因治療學(xué)會(ASGT)的月刊,是基因轉(zhuǎn)導(dǎo)、載體開發(fā)與設(shè)計、干細胞制造、基因、肽、蛋白、寡核苷酸的開發(fā)、細胞療法、疫苗開發(fā)、臨床前目標驗證、安全性/有效性研究和臨床試驗等領(lǐng)域的領(lǐng)先期刊。《Molecular Therapy》致力于促進遺傳學(xué)、醫(yī)學(xué)和生物技術(shù)的科學(xué)發(fā)展,影響因子為6.698。

          發(fā)布者:艾普拜生物科技(蘇州)有限公司
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