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          顯微課堂:探索分離具有重疊光譜的熒光團(tuán)的創(chuàng)新技術(shù)

          瀏覽次數(shù):620 發(fā)布日期:2025-9-1  來源:徠卡顯微鏡
          改善熒光團(tuán)的分離,并增加您可以在樣本中區(qū)分的熒光探針數(shù)量

          在顯微鏡實(shí)驗中,通常需要同時分析樣本中的多種結(jié)構(gòu)和分子。這可以通過使用不同顏色的熒光標(biāo)記標(biāo)記每個感興趣的特征來實(shí)現(xiàn)。然而,能夠成功區(qū)分的熒光團(tuán)數(shù)量是有限的。多色共聚焦顯微鏡經(jīng)常受到樣本中熒光探針光譜重疊的限制。本文探討了熒光團(tuán)光譜分離中的常見挑戰(zhàn)以及如何克服這些挑戰(zhàn),包括使用熒光壽命成像作為分離具有重疊光譜的熒光團(tuán)的替代方法。

          在本文中,我們探討了幾種策略,您可以采取這些策略來改善熒光團(tuán)的分離,并增加您可以在樣本中區(qū)分的熒光探針數(shù)量。

          介紹

          多色共聚焦顯微鏡是當(dāng)今細(xì)胞生物學(xué)實(shí)驗室中的一種基本技術(shù)。為了揭示生物系統(tǒng)的復(fù)雜性,需要能夠同時分析樣本中的多個結(jié)構(gòu)、分子和微環(huán)境,并將它們相互關(guān)聯(lián)。這可以通過使用不同顏色的熒光標(biāo)記或生物傳感器標(biāo)記每個感興趣的特征來實(shí)現(xiàn),然后進(jìn)行同時或順序的多通道成像,以捕獲每個探針在特定通道中的信號。然而,這種“多重化”方法的熒光染料數(shù)量是有限的。本文將深入探討限制多色共聚焦顯微鏡多重化能力的一些挑戰(zhàn),以及改善熒光染料分離并增加可區(qū)分熒光探針數(shù)量的一些策略。

          為什么多色共聚焦實(shí)驗如此具有挑戰(zhàn)性?

          在多色共聚焦顯微鏡中,無法找到合適的熒光探針組合是一個常見的難題,這可能會顯著延緩實(shí)驗進(jìn)展。導(dǎo)致這個問題的因素包括可用于光譜分離的熒光染料或熒光蛋白(FP)的可用性,以及共聚焦系統(tǒng)的限制,例如激發(fā)線、濾光片和探測器的數(shù)量和特異性。雖然有機(jī)熒光體的激發(fā)和發(fā)射峰通常在其最大高度的一半(FWHM)處寬度約為35納米,但完整的光譜特征往往可以跨越幾百納米,包括肩部和長尾部(見圖1)?紤]到可見光譜本身僅跨越約360納米(從約380到740納米),在多色實(shí)驗中,特別是結(jié)合超過三種熒光體的實(shí)驗中,光譜重疊幾乎是不可避免的。光譜重疊可能導(dǎo)致嚴(yán)重的偽影,包括熒光團(tuán)之間的不必要能量轉(zhuǎn)移和一種熒光團(tuán)的發(fā)射信號滲透到另一個熒光團(tuán)的檢測通道中(也稱為光譜串?dāng)_或交叉)。此外,還可能遇到自發(fā)熒光和光毒性問題,這些問題使得在某些光譜區(qū)域激發(fā)染料變得不可行。

          考慮一個四色實(shí)驗,其中首選染料為 Alexa 488、Alexa 546、Alexa 568 和 TOTO-3(圖 1)。激發(fā)線必須仔細(xì)定位,以避免在每個通道中激發(fā)超過預(yù)期的染料。這可能會帶來一些權(quán)衡,例如由于偏離峰值中心而導(dǎo)致某些物種的激發(fā)效率低下。更重要的是,發(fā)射曲線的強(qiáng)光譜重疊使得避免串?dāng)_偽影成為一項挑戰(zhàn)。因此,很難判斷在受影響的圖像通道中,實(shí)際上是哪個熒光染料產(chǎn)生了你所看到的信號。

          圖 1:Alexa 488、Alexa 546、Alexa 568 和 TOTO-3 的激發(fā)和發(fā)射光譜。

          串色的后果

          為了說明串色如何影響實(shí)驗結(jié)果,圖 2(A)顯示了僅兩個熒光染料的典型激發(fā)曲線,一個綠色和一個紅色。如圖 B 所示,這兩種染料的相應(yīng)發(fā)射曲線重疊。如果樣品中兩種染料的發(fā)射水平不可比,重疊的相對比例可能會更顯著(C)。當(dāng)發(fā)射的光通過檢測器(在這個假設(shè)的情況下通過帶通濾光片)時,兩個熒光染料的信號都在紅色通道中被檢測到(D)。

          像這樣的串色偽影可能導(dǎo)致數(shù)據(jù)解釋中的嚴(yán)重錯誤,特別是在研究亞細(xì)胞熒光染料的共定位或需要定量測量時。例如,當(dāng)將前面示例中的綠色和紅色通道圖像疊加時,會看起來好像這兩種染料部分共定位,而實(shí)際上它們被分隔在不同的亞細(xì)胞區(qū)室中(圖 3)。串色還可能影響依賴于強(qiáng)度測量的實(shí)驗,例如涉及福斯特共振能量轉(zhuǎn)移(FRET)或光漂白后的熒光恢復(fù)(FRAP)。

          圖 2:2a:綠色通道的發(fā)射光譜 - 所有FITC發(fā)射的¾進(jìn)入綠色通道,而¼進(jìn)入紅色通道。2b:紅色通道的發(fā)射光譜 - 所有 TRITC 發(fā)射的 1/5 進(jìn)入綠色通道,而 4/5 進(jìn)入紅色通道。2c:雙標(biāo)記樣品的發(fā)射信號。黑色曲線表示兩個熒光團(tuán)信號的總和。

          標(biāo)本標(biāo)記的考慮事項

          在為多色共聚焦實(shí)驗準(zhǔn)備樣本時,有許多重要的考慮事項和措施可以采取,以避免或減少由光譜重疊引起的偽影。

          01熒光染料選擇

          考慮是否可以用具有更窄發(fā)射峰和/或更大斯托克斯位移(激發(fā)和發(fā)射最大值之間的分離)的染料替代潛在問題熒光染料。例如,熒光量子點(diǎn)(QD)具有多種適合多重標(biāo)記的特性,包括相對較窄和對稱的發(fā)射曲線、光譜中均勻分布的多種顏色選擇,以及能夠使用相同激發(fā)波長同時激發(fā)多個光譜變體的能力。一些基因編碼的熒光蛋白(FP)也經(jīng)過工程改造以改善多重標(biāo)記,例如Keima和LSSmOrange,它們具有異常大的斯托克斯位移,使得與傳統(tǒng)熒光蛋白和化學(xué)染料結(jié)合時能夠進(jìn)行單次激發(fā)的多色成像。

          02 發(fā)射強(qiáng)度的平衡

          如果樣本中熒光團(tuán)的發(fā)射強(qiáng)度水平存在顯著差異,強(qiáng)熒光物種的信號可能會淹沒弱熒光物種的信號,從而導(dǎo)致特定通道中不成比例的串?dāng)_(見圖2)。目標(biāo)豐度、染料濃度、量子產(chǎn)率、光穩(wěn)定性和照明強(qiáng)度都是可能導(dǎo)致發(fā)射不平衡的因素。如果樣本中不同目標(biāo)的豐度差異很大,明智的做法是將最亮和最光穩(wěn)定的染料保留給豐度最低的目標(biāo)。在樣本準(zhǔn)備過程中,熒光探針的濃度應(yīng)仔細(xì)滴定。在某些情況下,這可能不可行,例如在成像表達(dá)差異調(diào)控FP物種的活細(xì)胞時。在這種情況下,可以通過使用陽性和陰性對照樣本優(yōu)化每個通道的激發(fā)強(qiáng)度,在圖像采集階段補(bǔ)償不平衡。

          03 對照樣本的準(zhǔn)備

          單染色對照樣本對于評估和減少在優(yōu)化圖像采集參數(shù)時的串?dāng)_至關(guān)重要。它們還提供了可以用于后續(xù)光譜解混的信息,并支持實(shí)驗結(jié)論(例如,在發(fā)布共定位研究或定量顯微鏡方法的結(jié)果時)。對于活細(xì)胞檢測,準(zhǔn)備有刺激和無刺激的重復(fù)單染色樣本(即陽性和陰性對照)非常重要,以便評估在預(yù)期的動態(tài)范圍內(nèi)潛在的串?dāng)_和其他偽影,并相應(yīng)地調(diào)整采集設(shè)置。

          圖 3:HeLa 細(xì)胞(成纖維細(xì)胞);藍(lán)色:Dapi,細(xì)胞核;綠色:Alexa 488,微管;紅色:TRITC 鬼筆環(huán)肽,肌動蛋白;灰色:Mito Tracker Red CMXRos,線粒體。

          優(yōu)化圖像采集以最大化光譜分離

          一旦樣品準(zhǔn)備得到優(yōu)化,下一步至關(guān)重要的步驟是優(yōu)化采集參數(shù)。

          01 儀器配置和采集設(shè)置

          光學(xué)光路的最佳設(shè)置,包括激光器的選擇、激發(fā)波長、濾光組合和檢測帶寬,對于最小化光譜串?dāng)_至關(guān)重要,尤其是在同時掃描期間?赡苄枰獙x器設(shè)置和樣品準(zhǔn)備采取迭代方法,以找到最小化偽影和實(shí)現(xiàn)可靠檢測和定量所需的動態(tài)范圍之間的理想平衡。這在活細(xì)胞實(shí)驗中尤其具有挑戰(zhàn)性,因為熒光蛋白表達(dá)水平和染料濃度可能會廣泛且不可預(yù)測地變化。

          02 順序成像

          在進(jìn)行同時多通道成像時,可能會出現(xiàn)由于激發(fā)或發(fā)射光譜交叉而產(chǎn)生的偽影。在兩種熒光染料的激發(fā)光譜足夠分離但發(fā)射特征重疊的情況下,可以通過一次使用一個激發(fā)線的順序成像來避免串?dāng)_。由于激發(fā)和發(fā)射特征在其不對稱性上往往相互鏡像,激發(fā)光譜的交叉傾向于發(fā)生在光譜的藍(lán)端(短波長),此時峰值往往有較長的尾部,而發(fā)射光譜更可能在光譜的紅端(長波長)有延伸的重疊尾部。這意味著短波長的熒光探針更可能滲透到長波長通道中,而不是反過來。因此,獲取圖像的順序可能會有所不同。通常建議先用最長波長激發(fā),然后依次向短波長工作。順序掃描的一個缺點(diǎn)是,對于某些應(yīng)用(例如監(jiān)測活細(xì)胞中的快速動態(tài)事件),它可能太慢。此外,順序成像無法防止在兩個或多個熒光探針被同一激光線激發(fā)的情況下出現(xiàn)串?dāng)_。

          光譜拆分算法

          盡管付出了最大的努力,但在實(shí)驗的前分析步驟中,可能無法防止或充分減少排放不平衡和光譜重疊。幸運(yùn)的是,在圖像采集后,仍然可以通過分析方法光譜分辨樣品中的熒光團(tuán)。為了將每個熒光團(tuán)的信號數(shù)學(xué)上恢復(fù)到其各自的通道,解混算法通;诰性解混或聚類分析方法。前者依賴于用戶估計的分布或使用參考光譜來計算每個成分熒光團(tuán)的分布系數(shù)。聚類分析方法提供了一個良好的替代方案。在沒有光譜信息的情況下,線性解混的替代方案。與使用參考光譜不同,主要的分布系數(shù)是通過擬合確定的。

          盡管光譜解混工具非常有用,但它們在樣本中解析熒光探針的能力有兩個主要限制。第一個限制是光譜解混受到系統(tǒng)中探測器數(shù)量的限制。換句話說,您無法解混超過系統(tǒng)能夠檢測的顏色。第二個主要限制是光譜解混算法無法區(qū)分相同顏色的熒光團(tuán),即那些具有相似發(fā)射光譜的熒光團(tuán)。

          除了光譜選項之外的壽命成像

          但是,如果有一種方法可以克服光譜成像的局限性,而無需向系統(tǒng)添加其他探測器或?qū)ふ姨娲臒晒馊玖夏?關(guān)鍵在于超越光譜信息的分析,增加另一個維度的分析:熒光壽命。熒光壽命是指熒光染料在發(fā)射光子之前處于激發(fā)態(tài)的時間。壽命信息與熒光強(qiáng)度信息是正交的,可以用來區(qū)分具有相似光譜但壽命不同的染料(圖4)。最近在壽命分析技術(shù)方面的進(jìn)展使得將壽命檢測能力集成到共聚焦掃描頭中成為可能,從而可以同時收集壽命和光譜信息。結(jié)果是能夠結(jié)合壽命和光譜信息,利用基于壽命的信息區(qū)分更多的熒光染料。
          圖 4:通過壽命對比區(qū)分的細(xì)胞骨架結(jié)構(gòu)。

          總結(jié)與結(jié)論

          在多色共聚焦顯微鏡中,熒光探針的良好光譜分離對于獲得高質(zhì)量結(jié)果和在實(shí)驗中包含更多熒光探針至關(guān)重要。在成像之前,仔細(xì)優(yōu)化樣品和儀器設(shè)置在減少不必要的光譜重疊引起的偽影方面起著重要作用。曾幾何時,圖像采集后幾乎沒有什么可以做的來改善結(jié)果,但通過光譜解混方法,現(xiàn)在可以在采集后解決重疊問題,盡管成像條件不理想。值得注意的是,在共聚焦平臺上實(shí)施壽命成像的開創(chuàng)性進(jìn)展,現(xiàn)在使得強(qiáng)大的熒光壽命能力能夠無縫集成到共聚焦顯微鏡工作流程中,為科學(xué)家提供了區(qū)分以前無法通過光譜解混區(qū)分的熒光探針的能力。

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